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明道大學 精緻農業學系碩士班 羅惠萍所指導 黃潤銓的 ‘滿天星’百香果莖頂組織培養之研究 （2021），提出jackfruit中文關鍵因素是什麼，來自於莖頂培養、‘滿天星’百香果。

而第二篇論文大葉大學 食品暨應用生物科技學系 吳建一所指導 廖峻達的 探討Xylaria nigripes之固態發酵萃取物及其抗氧化活性之研究 （2021），提出因為有 黑柄炭角菌、液態發酵、固態發酵、抗氧化活性的重點而找出了 jackfruit中文的解答。

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‘滿天星’百香果莖頂組織培養之研究

為了解決jackfruit中文的問題，作者黃潤銓 這樣論述：

本研究探討以不同鹽類濃度、培養基型態及生長調節劑，對‘滿天星’百香果莖頂初代及增殖培養之影響。鹽類濃度有1/4MS、1/2MS及MS，以1/2MS培養其培植體鮮重其雖較以MS培養小，但其癒傷組織率低，展葉良好。培養基型態有固態、雙相及液態紙橋培養基，其中液態紙橋培養基其培植體鮮重較重，且無癒傷組織，並展葉良好。生長調節劑有NAA(0~0.04 mg/L)、BA(0~0.4 mg/L)及NAA 0.02 mg/L與BA(0~0.4 mg/L)之組合，於各處理及組合以僅添加0.02 mg/L NAA，其培植體表現良好，鮮重可達15.4 mg，且無癒傷組織形成。初代培養之建立培植體取之季節，在

夏季摘取之培植體，不僅鮮重表現最佳，無癒傷組織生成。經本研究結果‘滿天星’百香果莖頂初代培養，建議培養基鹽類濃度以1/2MS、培養基型態以液態紙橋培養並添加 0.02 mg/L NAA其培植體且有較佳的生長情形。 增殖培養階段，在添加kinetin時，增殖率以0.6 mg/L kinetin結合0.02 mg/L NAA之固態培養基，其增殖率最佳達2.1個芽，其癒傷組織生成率極低。在添加2iP時，培植體伸長效果最佳，濃度0.4-1 mg/L 2iP結合0.02 mg/L NAA之固態培養基，芽長達5.4-5.8mm，但僅在低濃度之0.1 mg/L之2iP無癒傷組織生成，其他各濃度皆有癒傷組織

生成。增殖培養有添加TDZ之處理者皆有癒傷組織生成，且添加TDZ之處理者與其他兩種生長調節劑2iP及kinetin比較，其增殖及培植體伸長皆表現不佳。在溫度試驗增殖及培植體伸長三種溫度雖無差異，但在30。C不僅存活率最高，同時無褐化及癒傷組織生成。最後培養基型態以固態培養基較雙向培養基表現佳，雙向培養基之培植體顏色黯淡，且部分培植體出現玻璃質化的情況。

探討Xylaria nigripes之固態發酵萃取物及其抗氧化活性之研究

為了解決jackfruit中文的問題，作者廖峻達 這樣論述：

封面內頁簽名頁中文摘要 iiiABSTRACT iv誌謝 v目錄 vi圖目錄 xiii表目錄 xviii1. 前言 12. 文獻回顧 32.1. 藥用真菌介紹 32.2. 生物活性及其成分 42.2.1. 蟲草素(cordycepin) 42.2.2. 腺苷(Adenosine) 72.2.3. 麥角甾醇(Ergosterol) 92.2.4. γ-胺基丁酸(γ-Aminobutyric acid, GABA) 112.2.5. 多醣(Polysaccharides) 132.2.6. 多酚(Polyphenols) 142.2.7. 類黃酮(Flavonoid) 162.3. 生物活性之

相關研究 172.3.1. 抗氧化活性(Antioxidant activity) 172.3.2. 發炎活性(Anti-inflammatory activity) 212.4. Xylaria sp.之簡介及相關研究 232.5. 真菌人工培養之方法 252.5.1. 液態發酵(Submerged fermentation，簡稱SMF) 252.5.2. 固態發酵(Solid state fermentation，簡稱SSF) 262.5.3. SSF和SMF之間的區別 302.6. 真菌萃取活性成分之研究 332.6.1. 超音波輔助萃取(Ultrasound-assisted extr

action，簡稱UAE) 332.6.2. 微波輔助萃取(Microwave-assisted extraction，簡稱MAE) 342.6.3. 超臨界流體萃取(Supercritical fluid extraction，簡稱SEF) 352.6.4. 不同萃取技術的優缺點 373. 材料方法 403.1. 實驗材料 403.1.1. 實驗藥品 403.1.2. 儀器設備 423.2. 實驗方法 433.2.1. 黑柄炭角菌菌種篩選及鑑定 433.2.2. 黑柄炭角菌菌絲體液態發酵 443.2.2.1. 不同碳源種類對黑柄炭角菌菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 453.2.2.2

. 不同碳源濃度對黑柄炭角菌菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 453.2.2.3. 不同氮源種類對黑柄炭角菌菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 453.2.2.4. 不同氮源濃度對黑柄炭角菌菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 463.2.2.5.不同溫度對黑柄炭角菌菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 463.2.3. 黑柄炭角菌固態發酵 473.2.3.1. 不同穀物對黑柄炭角菌子實體生長之影響 483.2.3.2. 不同光強度對黑柄炭角菌子實體生長之影響 483.2.3.3. 不同光波長對黑柄炭角菌子實體生長及成分含量之影響 493.2.3.4. 不同穀物在直接光照及暗室培

養七天對黑柄炭角菌子實體生長之影響 513.2.3.5. 不同濃度RB前培養之菌絲接入不同固態培養基對黑柄炭角菌子實體生長之影響 513.2.4. 不同萃取溶劑及萃取方法 513.3. 分析方法 523.3.1. 生物質量乾重分析 523.3.2. 胞外多醣乾重分析 523.3.3. 蟲草素及腺苷含量分析 533.3.3.1. 標準曲線 533.3.3.2. HPLC操作條件 533.3.4. 尿苷、尿嘧啶、腺嘌呤含量分析 553.3.4.1. 標準曲線 553.3.4.2. HPLC操作條件 553.3.5. 麥角甾醇含量分析 583.3.5.1. 標準曲線 583.3.5.2. HPLC操

作條件 583.3.6. γ-Aminobutyric acid (GABA)含量分析 593.3.6.1. 標準曲線 593.3.6.2. HPLC操作條件 603.3.7. 多醣含量測定 613.3.8. 蛋白質含量測定 623.3.9. 總酚含量 633.3.10. 總類黃酮含量 643.3.11. ABTS自由基清除試驗 663.3.12. DPPH自由基清除試驗 663.3.13. 還原力能力測定 673.3.14. 亞鐵螯合能力測定 673.3.15. 鐵離子還原能力測定 683.3.16. SOD-like活性分析(鄰苯三酚自氧化法) 693.4. 抗菌試驗 703.4.1.

Escherichia coli菌種活化 703.4.2. Staphylococcus aureus菌種活化 703.4.3. Propionibacterium acnes菌種活化 713.4.4. 抗菌能力試驗 714. 結果討論 724.1. Xylaria adscendens WU之菌種鑑定 724.2. 探討X. adscendens WU菌絲體液態發酵 744.2.1. 不同碳源種類對X. adscendens WU菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 744.2.2. 不同碳源濃度對X. adscendens WU菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 784.2.3.

不同氮源種類對X. adscendens WU菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 824.2.4. 不同氮源濃度對X. adscendens WU菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 904.2.5. 不同溫度對X. adscendens WU菌絲體生物質量、胞外多醣成分含量之影響 964.3. 探討X. adscendens WU固態發酵 994.3.1. 不同穀物對X. adscendens WU子實體生長之影響 994.3.2. 不同光強度對X. adscendens WU子實體生長之影響 1044.3.3. 不同光波長對X. adscendens WU子實體生長 之影響 1094

.3.4. 不同穀物在直接光照及暗室培養七天對X. adscendens WU子實體生長之影響 1134.3.5. 不同濃度RB前培養之菌絲接入不同固態培養基對X. adscendens WU子實體生長之影響 1174.4. 不同萃取溶劑及萃取方法成分含量之影響 1224.4.1. 探討X. adscendens WU最佳固態發酵子實體及基底物萃取物成分含量之影響 1224.4.2. 探討X. adscendens WU在不同光波長下基底物萃取物成分含量之影響 1254.5. X. adscendens WU不同部位萃取物之抗氧化活性 1294.5.1. X. adscendens WU菌絲體

萃取物之抗氧化活性 1294.5.1.1. X. adscendens WU菌絲體萃取物之ABTS自由基清除試驗 1294.5.1.2. X. adscendens WU菌絲體萃取物之 DPPH自由基清除試驗 1344.5.1.3. X. adscendens WU菌絲體萃取物之還原力能力 1374.5.1.4. X. adscendens WU菌絲體萃取物之亞鐵離子螯合能力 1404.5.1.5. X. adscendens WU菌絲體萃取物之鐵離子還原能力 1444.5.1.6. X. adscendens WU菌絲體萃取物之SOD like活性 1474.5.2. X. adscende

ns WU基底物之抗氧化活性 1504.5.2.1. X. adscendens WU基底物萃取物之ABTS自由基清除試驗 1504.5.2.2. X. adscendens WU基底物萃取物之DPPH自由基清除試驗 1544.5.2.3. X. adscendens WU基底物萃取物之還原力能力 1574.5.2.4. X. adscendens WU基底物萃取物之亞鐵離子螯合能力 1604.5.2.5. X. adscendens WU基底物萃取物之鐵離子還原能力 1634.5.2.6. X. adscendens WU基底物萃取物之SOD like活性 1664.6. X. adscen

dens WU不同部位萃取物之抗菌試驗 1694.6.1. X. adscendens WU菌絲體萃取物對E. coli、S. aureus及P. acnes的抗菌效果 1694.6.2. X. adscendens WU基底物萃取物對E. coli、S. aureus及P. acnes的抗菌效果 1725. 結論 175參考文獻 177圖目錄Fig. 1-1 實驗架構 2Fig. 2-1. 蟲草素的分子結構 6Fig. 2-2. 腺苷的分子結構 9Fig. 2-3. 麥角甾醇的分子結構 10Fig. 2-4. GABA的分子結構 12Fig. 2-5. Xylaria sp. 25Fig.

2-6. 影響SSF之因素 28Fig. 2-7. 實驗室規模的SEF萃取設備 37Fig. 3-1. 液態發酵結構介紹 44Fig. 3-2. 黑柄炭角菌絲體液態發酵流程 44Fig. 3-3. 固態發酵結構介紹 47Fig. 3-4. 黑柄炭角菌穀物固態發酵流程 48Fig. 3-5. 探討不同光波長試驗示意圖 50Fig. 3-6. 蟲草素檢量線 54Fig. 3-7. 腺苷檢量線 54Fig. 3-8. 尿苷檢量線 56Fig. 3-9. 尿嘧啶檢量線 57Fig. 3-10. 腺嘌呤檢量線 57Fig. 3-11. 麥角固醇檢量線 59Fig. 3-12. GABA檢量線 60Fi

g. 3-13. 多醣濃度的檢量線 61Fig. 3-14. 蛋白質濃度的檢量線 63Fig. 3-15. 總酚濃度的檢量線 64Fig. 3-16. 類黃酮的檢量線 65Fig. 3-17. FeSO4．7H2O的檢量線 69Fig. 4-1. Xylaria adscendens WU之親緣樹圖 73Fig. 4-2. X. adscendens WU在不同碳源種類下培養7天之pH值、胞外多醣及Biomass 77Fig. 4-3. X. adscendens WU以葡萄糖、蔗糖及糖蜜在不同濃度下培養4天之pH值、胞外多醣及Biomass 81Fig. 4-4. X. adscendens

WU在不同氮源種類下以葡萄糖作為碳源培養8天後之pH值、胞外多醣及Biomass 87Fig. 4-5. X. adscendens WU在不同碳源種類下以蔗糖作為碳源培養8天後之pH值、胞外多醣及Biomass 88Fig. 4-6. X. adscendens WU在不同碳源種類下以糖蜜作為碳源培養8天後之pH值、胞外多醣及Biomass 89Fig. 4-7. 探討碳源為葡萄糖時氮源為酵母萃取物在不同濃度下培養X. adscendens WU菌絲體8天後之pH值、胞外多醣及Biomass 94Fig. 4-8. 探討碳源為糖蜜時氮源為酵母萃取物在不同濃度下培養X. adscendens

WU菌絲體8天後之pH值、胞外多醣及Biomass 95Fig. 4-9. 探討在不同溫度下培養X. adscendens WU菌絲體7天後之pH值、胞外多醣及Biomass 98Fig. 4-10. 不同穀物對X. adscendens WU固態發酵基底物含水率產率之影響 102Fig. 4-11. 不同穀物對X. adscendens WU固態發酵子實體產量及穀物消耗重之影響 103Fig. 4-12. 不同光強度對X. adscendens WU固態發酵基底物含水率產率之影響 107Fig. 4-13. 不同光強度對X. adscendens WU固態發酵子實體產量及穀物消耗重之影響

108Fig. 4-14. 不同光波長對X. adscendens WU固態發酵基底物含水率產率之影響 111Fig. 4-15. 不同光波長對X. adscendens WU固態發酵子實體產量及穀物消耗重之影響 112Fig. 4-16. 不同穀物在直接光照及暗室培養七天對X. adscendens WU固態發酵基底物含水率產率之影響 115Fig. 4-17. 不同穀物在直接光照及暗室培養七天對X. adscendens WU固態發酵子實體產量及穀物消耗重之影響 116Fig. 4-18. 不同濃度RB前培養之菌絲接入不同固態培養基對X. adscendens WU (QN)固態發酵基底物

含水率產率之影響 120Fig. 4-19. 不同濃度RB前培養之菌絲接入不同固態培養基對X. adscendens WU (QN)固態發酵子實體產量及穀物消耗重之影響 121Fig. 4-20. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體水萃物的清除ABTS自由基能力 131Fig. 4-21. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體酒萃物的清除ABTS自由基能力 132Fig. 4-22. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體水萃物的DPPH自由基清除能力 135Fig. 4-23. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體酒萃物的DPPH自由基清除能力 136

Fig. 4 24. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體水萃物的還原能力 138Fig. 4 25. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體酒萃物的還原能力 139Fig. 4-26. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體水萃物的亞鐵離子螯合能力 142Fig. 4-27. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體酒萃物的亞鐵離子螯合能力 143Fig. 4-28. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體水萃物的鐵離子還原能力 145Fig. 4-29. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體酒萃物的鐵離子還原能力 146Fig. 4-30.

不同濃度X. adscendens WU菌絲體水萃物的超氧陰離子自由基清除能力 148Fig. 4-31. 不同濃度X. adscendens WU菌絲體酒萃物的超氧陰離子自由基清除能力 149Fig. 4-32. 不同濃度X. adscendens WU基底水萃物的清除ABTS自由基能力 151Fig. 4-33. 不同濃度X. adscendens WU基底酒萃物的清除ABTS自由基能力 152Fig. 4-34. 不同濃度X. adscendens WU基底水萃物的DPPH自由基清除能力 155Fig. 4-35. 不同濃度X. adscendens WU基底酒萃物的DPPH自由基清除

能力 156Fig. 4-36. 不同濃度X. adscendens WU基底水萃物的還原能力 158Fig. 4-37. 不同濃度X. adscendens WU基底酒萃物的還原能力 159Fig. 4-38. 不同濃度X. adscendens WU基底水萃物的亞鐵離子螯合能力 161Fig. 4-39. 不同濃度X. adscendens WU基底酒萃物的亞鐵離子螯合能力 162Fig. 4-40. 不同濃度X. adscendens WU基底水萃物的鐵離子還原能力 164Fig. 4-41. 不同濃度X. adscendens WU基底酒萃物的鐵離子還原能力 165Fig. 4-42.

不同濃度X. adscendens WU基底水萃物的超氧陰離子自由基清除能力 167Fig. 4-43. 不同濃度X. adscendens WU基底酒萃物的超氧陰離子自由基清除能力 168表目錄Table 2-1. 固態發酵的定義 29Table 2-2. SSF的優、缺點 30Table 2-3. SSF和SMF的詳細比較 32Table 2-4. 不同萃取技術的優、缺點 39Table 3-1. 不同光波長Irradiance (%)輻照度 49Table 3-2. 黑柄炭角菌萃取物條件代號表 52Table 4-1. 探討不同碳源種類培養X. adscendens WU菌絲體7天之生

長狀況 76Table 4-2. 探討葡萄糖、蔗糖及糖蜜在不同濃度下培養X. adscendens WU菌絲體4天之生長狀況 80Table 4-3. 探討不同氮源種類以葡萄糖作為碳源培養X. adscendens WU菌絲體8天之生長狀況 84Table 4-4. 探討不同氮源種類以蔗糖作為碳源培養X. adscendens WU菌絲體8天之生長狀況 85Table 4-5. 探討不同氮源種類以糖蜜作為碳源培養X. adscendens WU菌絲體8天之生長狀況 86Table 4-6. 探討碳源為葡萄糖時氮源為酵母萃取物在不同濃度下培養X. adscendens WU菌絲體8天 之生長狀況

92Table 4-7. 探討碳源為糖蜜時氮源為酵母萃取物在不同濃度下培養X. adscendens WU菌絲體8天之生長狀況 93Table 4-8. 探討在不同溫度下培養X. adscendens WU菌絲體7天之生長狀況 97Table 4-9. 不同榖物對X. adscendens WU固態培養子實體28天之生長狀況 101Table 4-10. 不同光強度對X. adscendens WU固態培養子實體28天之生長狀況 106Table 4-11. 不同光波長對X. adscendens WU固態培養子實體28天之生長狀況 110Table 4-12. 不同穀物在直接光照及暗室培養

七天對X. adscendens WU固態培養子實體28天之生長狀況 114Table 4-13. 不同濃度RB前培養之菌絲接入不同固態培養基對X. adscendens WU (QN)固態培養子實體28天之生長狀況 118Table 4-14. X. adscendens WU在不同萃取溶劑及萃取方法之成分含量分析 124Table 4-15. QN在不同溶劑及萃取方法之成分含量分析 127Table 4-16. X. adscendens WU在不同光波長下以不同溶劑及萃取方法對基底物之成分含量分析 128Table 4-17. X. adscendens WU菌絲體抗氧化活性分析 133

Table 4-18. X. adscendens WU基底抗氧化活性分析 153Table 4-19. X. adscendens WU菌絲體對E. coli、S. aureus及P. acnes的抗菌效果 170Table 4-20. X. adscendens WU菌絲體對E. coli、S. aureus及P. acnes的抗菌抑菌圈大小 171Table 4-21. X. adscendens WU基底對E. coli、S. aureus及P. acnes的抗菌效果 173Table 4-22. X. adscendens WU基底對E. coli、S. aureus及P. acne

s的抗菌抑菌圈大小 174

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